1、免疫透射比濁法：
（1）標本應是及時分離的空腹血清，可密封存放在2～6℃冰箱中，1周內測定，-20℃可存放半年。
（2）用全自動分析儀時，應根據不同儀器設計參數，合理選擇抗原抗體比例及反應時間。也可作速率法散射比濁測定CM如用Beckman比濁儀ICS或protein array system）。
（3）手工法所用儀器：精密光度計，具有340nm濾光片（或分光器），樣品池體積以0.5ml為宜（為節省抗血清），最好用流動杯，樣品稀釋最好用稀釋器、經校正的加樣器。
（4）標本處理：將血清標本及質控血清各用樣品稀釋劑作1：200稀釋，即先作1：20稀釋（5.Oμl血清+95μl稀釋劑）后，再作1：10稀釋（多余的1：20血清作測定apoB用）。
混勻后，25～37℃放置30min，在波長340nm比濁，根據U-UB的A值，在標準曲線上讀出結果。
本法批間CV<5%。
（5）校準曲線：在手工與半自動操作中每批測定均需作校準曲線，可將校準血清稀釋成1：100、1：200、1：300和1：400等4種濃度，與標本同樣操作，根據定值計算出每個標準管CM濃度，以濃度（X）與其相應的A值（Y）作圖（用直線回歸計算），基本上成直線，但在Y軸上有一定截距，所以不能用單點標準。操作準確時濃度與A值的相關系數應在0.985以上。
如有高、中、低濃度的三份校準血清時，可與標本同樣操作，做三點定標，也可作五點定標（即高、中濃度的血清等量混合，及中、低濃度的血清等量混合，成為另兩份校準血清）。
本法線性范圍：0.4～2.5g/L。
2、火箭電泳法：
（1）澆板：每板用10g/L瓊脂糖10ml，沸水浴中融化，混勻，冷至50～55℃時加入CM抗血清50μl，apoB抗血清8μl（用量視抗血清效價而定），迅速混勻后倒在預置在水平臺上的玻璃板上，冷后放在4℃，20min后打孔，孔在板的陰極端，孔徑3mm，孔間距至少5mm，孔容量5μl。把板放入電泳槽，用濾紙搭橋。
（2）稀釋抗原：用0.15mol/L NaCl液將校準血清稀釋成1：100，1：150，1：200，1：300，及1：400（作校準曲線之用），血清標本按1：200稀釋，放4℃冰箱不得超過3天。
（3）加樣：在低電流狀態（10mA/板）將稀釋好的定值血清及標本分別吸取5μl（準確），加入瓊脂糖凝膠加樣孔內。每板都要做一系列標準。
（4）通電：穩流24mA/板，端電壓6～8V/cm，以流水冷卻使瓊脂糖保持15℃，電泳3～4h。
（5）脫雜蛋白及制干膠膜：電泳后的瓊脂糖板浸泡在0.15mol/L NaCl中30min，將膠膜托置于聚酯薄膜上，用多層濾紙在輕輕加壓下吸干膠內水分，然后將濾紙、膠膜與聚酯膜三者一起自然干燥，或用熱吹風器吹干，干后膠膜會自然與濾紙及聚酯膜分開。
（6）染色：將瓊脂糖膠膜平鋪浸泡于染色液內20～30min。
（7）脫色：用脫色液浸泡已染色的膠膜至火箭峰清晰，背景基本無色。可在水中用兩片玻璃紙將膠膜夾住，晾干后可長期保存。也可以用流水浸泡脫色至背景干凈。
附注：
①抗原稀釋倍數與抗血清用量的選擇，應以火箭峰清晰、校準曲線斜率適中并成直線為宜。本法同時測定apoA-Ⅰ與apoB，應調整兩種抗血清用量，使二者峰高有區別，apoB峰高不小于1cm。
②不同種類來源的抗血清（如兔與羊），在等效價的情況下進行試驗，結果會有差異。apoA-Ⅰ測定以兔抗血清為好。用兔血清時峰形尖細，而羊血清所產生的峰粗，峰尖圓鈍，有時在峰頂前出現虛影。校準血清所作校準曲線斜率也不同。但不論用何種抗血清，定量結果差別不大。
③在一定條件下電泳，不同稀釋度校準血清的峰高不會有明顯變動，校準曲線斜率基本一致。如標本峰高超出校準曲線范圍時，應調整標本稀釋倍數后重測。板間CV通常小于5%。
④火箭電泳結果可以用染色法或直接肉眼觀察可見的火箭峰。前者用標本少，節省抗血清，但如適當增加標本及抗血清用量，不染色更為方便。所用瓊脂糖應為標準電滲或低電滲的，凝膠中加入適量葡聚糖或聚乙二醇可使火箭峰更清晰。
⑤火箭峰的測量可以計算面積或峰高，面積是峰高乘以峰寬（峰半高處的寬度）。測量精度最好能達0.1mm。須用機械或電子放大設備。標準曲線范圍內峰高以1～4cm為宜。
⑥本法適用于少量標本分析。也適用于apoAⅡ、CⅠ、CⅡ、CⅢ、D、E及Lp（a）測定。