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    發布時間:2019-03-26 15:24 原文鏈接: 用固化Ni2+吸收色譜純化帶組氨酸標簽的蛋白實驗

    多聚組氨酸能與多種過渡金屬和過渡金屬螯合物結合,因此帶暴露的 His-6 的蛋白能結合于固化 Ni2+樹脂,用適當緩沖液沖洗去除其他蛋白后,再用可溶的競爭性螯合劑洗脫可以回收靶蛋白。本實驗來源于分子克隆實驗指南(第三版)下冊,作者:〔美〕J. 薩姆布魯克 D.W. 拉塞爾。


    實驗材料

    表達帶多聚組氨酸標簽的蛋白的大腸桿菌細胞

    試劑、試劑盒

    結合緩沖液咪唑洗脫緩沖液TritonX-100洗滌緩沖液SDS-聚丙烯酰胺凝膠

    儀器、耗材

    Sorvall SS-34 轉頭或相當的轉頭層析柱固化 Ni2+層析樹脂搖床

    實驗步驟

    材料

    緩沖液和溶液

    貯存液、緩沖液和試劑的成分參見附錄 1。
    貯存液稀釋至適當濃度。

    結合緩沖液(pH7.8)
    20 mmol/L 磷酸鈉
    500 mmol/LNaCl

    咪唑洗脫緩沖液(pH6.0)
    20 mmol/L 磷酸鈉
    500 mmol/LNaCl
    在洗滌緩沖液(pH6.0) 中加入適量 3mol/L 咪唑分別配成 10 mmol/L、50 mmol/L、100 mmol/L 和150 mmol/L 的咪唑洗脫緩沖液。

    TritonX-100(10%V/V)

    洗滌緩沖液(pH6.0)
    20 mmol/L 磷酸鈉
    500 mmol/LNaCl

    酶和緩沖液
    DNase(1 mg/ml)
    溶菌酶
    RNase(1 mg/ml)

    凝膠

    SDS-聚丙烯酰胺凝膠(10%)
    用于分離蛋白的 SDS-聚丙烯酰胺凝膠的制備參考附錄 8。

    離心機和轉頭

    Sorvall SS-34 轉頭或相當的轉頭

    特別配備

    層析柱(玻璃或聚丙烯)

    固化 Ni2+層析樹脂(如 ProBond,Invitrogen 公司;HisTrap,Pharmacia 公司;His.Bind Resin,Novagen 公司;NTA-Ni2+-瓊脂糖,Qiagen 公司)
    目前最常用的金屬螯合親和載體是次氨基蘭乙酸酯(NTA)-Ni2+-瓊脂糖,可從上述公司購買,另外還有不同性質的其他載體。據說一種獨特的 Co2+螯合物(Talon) 對 His-6 的親合力更高,選擇性也更強,但在實驗室再生不方便. 因此成本也就更高。

    搖床

    載體和細菌菌株
    表達帶多聚組氨酸標簽的蛋白的大腸桿菌細胞(方案 1、2、3 或 4 產生)。

    方法

    Ni2+親和柱的制備

    1. 輕輕顛倒混勻固化 Ni2+樹脂,取 2 ml 裝入層析柱,樹脂自然沉降。

    2. 用 3 倍柱體積的無菌水沖洗樹脂。
    樹脂沉降后的體積為 1 個柱體積。

    3. 用 3 倍柱體積的結合緩沖液(pH7.8) 平衡樹脂,放置待第 9 步使用。

    制備細胞抽提物

    4. 每 100 ml 細胞培養物的細胞沉淀(方案 1 步驟 17) 懸于 4 ml 結合緩沖液(pH7.8)。

    5. 加入溶菌酶至終濃度 1 mg/ml, 冰上放置 30 min。
    有些方案中在親和純化帶組氨酸標簽蛋白之前,采用超聲或 French 壓的方法裂解細胞。使用溶菌酶的方法重復性更好,而且不會引起細胞的災難性裂解,后者釋放外膜蛋白和能引起帶組氨酸標簽蛋白聚集的其他分子。
    注意:可以加入蛋白酶抑制刑,但不能加入 EDTA 或其他螯合劑,因為它們會將 Ni2+從樹脂上帶下來. 破壞樹脂對組氨酸的親合力。

    6. 混和物于 4°C 搖床上孵育 10 min。

    7. 加入 Triton X-100、DNase 和 RNase, 終濃度分別為 1%、5ug/ml 和 5ug/ml,再于 4°C 搖床上孵育 10min。

    8.4°C 3000 g(5000 r/min Sorvall SS-34 轉頭)離心 30 min, 去除不溶性細胞碎片。上清(細胞裂解物)轉移到一只新管中。
    為防止純化過程中樹脂被堵塞, 上淸需要用 0.45 濾膜過濾。

    純化帶組氨酸標簽蛋白

    9. 樹脂上的結合緩沖液引流到柱頂部。

    10. 步驟 8 獲得的細胞裂解液上清上柱,流速調整為每小時 10 個柱體枳。
    1 ml Ni2+親和樹脂能結合大約 8~12 mg 蛋白。帶多聚組氨酸標簽的蛋白在大腸桿菌中的產量因靶蛋白而異,但一般都在每 100 ml 培養物蛋白之間 。

    11. 用 6 個柱體積的結合緩沖液(pH7.8) 洗柱。

    12. 用 4 個柱體積的洗滌緩沖液(pH6,0) 洗柱,直至流過液 A280<0.01。

    13. 用 6 個柱體積的 10 mmol/L 咪唑洗脫緩沖液洗脫結合的蛋白,每份 1 ml 分步收集,監測 A280。

    14. 用咪唑濃度更高(50 mmol/L、100 mmol/L 和 150 mmol/L) 的洗脫緩沖液重復步驟 13。
    也可用 10~100 mmol/L 連續梯度咪唑洗脫緩沖液洗脫結合的蛋白,多數組氨酸標簽蛋白在 50~100 mmol/L 之間被洗脫。如果不使用咪唑,還可以用 pH 遞降的緩沖液洗脫(請參考替代方案:用 pH 遞降的緩沖液從金屬親和柱洗脫多聚組氨酸標簽蛋白)。

    15. 用 20ul 等份的蛋白進行 10%SDS 聚丙烯酰胺凝膠電泳,分析聚組氨酸標簽蛋白的分布。


    收起 
    其他

    本實驗來源于分子克隆實驗指南(第三版)下冊,作者:〔美〕J. 薩姆布魯克 D.W. 拉塞爾。


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