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    發布時間:2020-09-14 11:13 原文鏈接: 重組表達載體pET32aHisAPC10的序列測定

    通過上述實驗所構建的表達質粒pET-32a-His-APC10經限制性內切酶分析正確后,必須進行DNA序列測定,以獲得序列完全正確的克隆。

    1. 基本原理
    目前應用的DNA序列測定方法有雙脫氧法(Sanger法)和化學測序法(Maxam-Gilbert法),在變性聚丙稀酰胺凝膠(測序膠)上進行高分離度的電泳過程是傳統DNA序列測定的工作基礎。本實驗采用新的毛細管電泳法,根據雙脫氧法測序的原理,進行熱循環測序。測序反應中,測序酶FS以待測DNA為模板,在引物的啟動下,按5'到3'方向合成與模板互補的新生DNA鏈;同時,將某一特定的熒光標記的雙脫氧核糖核酸( ddNTP )隨機摻入在新生鏈中,使合成反應被選擇性終止在A、C、G、T處,形成長短不一的末端有熒光標記的DNA鏈。由于四種雙脫氧核糖核酸末端標記有不同的熒光顏料,在激光激發下,不同熒光標記的ddNTP具有不同的熒光波長,因此,每個樣品只需作一個反應。用熱循環法進行DNA測序反應,少量的模板被重復用于生產DNA序列梯度,雙脫氧測序反應混合物反復進行類似PCR反應的變性、退火和延伸的步驟,測序產物以線性增長。反應產物經純化、變性后,上樣到預裝有POP-6多聚體的毛細管中。樣品注射液中含有甲酰胺,能破壞DNA的二級結構,在電場作用下,單鏈DNA因分子量大小不同而出現泳動速度的差異,分辨率可達一個堿基。當長短不同的DNA鏈依次通過熒光界面時,該界面的激光光束可激發其末端的熒光物質,使其發射熒光。熒光信號被CCD照相機接收并轉換為電信號,測序軟件對其進行分析、轉換并儲存為序列圖譜。

    2. 材料
    1)待測DNA模板,即pET-32a-His-APC10。
    2)Applied Biosystems生產的ABI PRISM BigDye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kits,內含不同熒光顏料標記的ddNTP mix、dNTP mix、耐熱DNA聚合酶FS、MgCl2、pH9.0的Tris-HCl緩沖液等測序所需試劑。
    3)乙醇,醋酸鈉,樣品注射液Hi-Di Formamide。

    3. 儀器
    1) Applied Biosystems生產的全自動毛細管測序儀ABI PRISM 3100 Genetic Analyzer。
    2) Applied Biosystems生產的全自動PCR儀GeneAmp PCR System 9700。


    易生物儀器庫:http://www.ebioe.com/yp/product-list-42.html

    4. 方法
    1) 測序反應:
    PCR總反應體積為10μl,組成如下:
    DNA 250ng
    Primer 3.2pmol/μl 1μl
    BigDye mix 4μl
    H2O x μl
    PCR反應條件如下:
    98°C 2min
    96°C 20 sec, 50°C 20 sec, 60°C 4min, 25 cycles
    反應產物純化:本實驗利用乙醇沉淀法純化延伸產物,方法如下:
    沉淀反應物,將以下各組分混勻,-70°C,靜置10 min;
    PCR反應液 10μl
    水 10μl
    3M NaAc 2μl
    乙醇(100%) 50μl
    離心,13,000rpm,20min,4°C,棄上清;
    洗滌,加200μl 90%乙醇,離心,13,000rpm,20min,4°C,棄上清;
    重復上述過程一次;
    干燥 ,加30μl Hi-Di Formamide,重懸延伸產物;
    95°C,變性5分鐘
    易生物試劑庫:http://www.ebioe.com/yp/product-list-43.html
    2) 毛細管電泳:
    將溶解后的反應產物轉至96孔板中,自動上樣器上樣,電泳。
    3) 數據采集與處理:
    CCD照相機接收熒光信號并將其轉換為電信號,測序軟件分析、處理并儲存數據。

    5. 特點
    1) 模板范圍寬,不必將目的基因克隆到特定載體中,可對單鏈、雙鏈DNA模板、PCR產物及BAC等進行測序。
    2) 單鏈和雙鏈模板的操作程序相同。
    3) 雙鏈模板不需預先進行堿變性。
    4) 需要的模板量很少。
    5) 測序反應需要的人工操作較少,不需要制聚丙稀酰胺凝膠,不需要人工上樣,自動化程度高。
    6) 16個樣品同時檢測,測序的敏感性高。
    7) 可快速分離樣品,電泳僅需要兩小時。
    8) 結果重復性好。

    6. 技術要點
    1) 模板制備:模板純度要求較高,不能有蛋白質、鹽、去垢劑及RNA的殘留。
    2) 對于GC比例較高的模板(>70%),在反應前,先在98°C加熱5分鐘,使模板充分變性。
    3) 如果引物的Tm值>60°C ,退火反應可省略;如果引物的Tm<50°C,退火反應時間應延長至30秒鐘或將退火溫度降低至48°C。
    4) 模板量要適中,具體用量可參照以下標準:
    PCR產物: 100-200bp 1-3 ng
    200-500bp 3-10 ng
    500-1000bp 5-20 ng
    1000-2000bp 10-40 ng
    >2000bp 40-100 ng
    單鏈模板:50-100 ng
    雙鏈模板:200-500 ng
    如果待測PCR產物小于30 bp,反應可少于20個循環。
    5)反應產物必需純化,徹底去除未摻入的熒光標記的雙脫氧核糖核酸,純化方法可采用柱純化法或沉淀法。
    6)用其它型號的PCR儀時,應優化PCR反應條件。



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