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    發布時間:2019-03-27 19:47 原文鏈接: RNA的Nouthern印跡和狹線雜交分析實驗

    Northern blot 是研究基因表達的最嚴謹的方法之一,可以定量分析組織中某一特異 mRNA 的表達豐度,根據其遷移位置也可以判斷基因表達轉錄物的大小。該技術應用十分廣泛,常用于分析 RNA 樣品中特定 mRNA 的大小和豐度,也可用于基因表達調控、基因結構及功能、遺傳變異等研究。

    實驗材料

    RNA

    試劑、試劑盒

    DEPCMOPS甲醛瓊脂糖乙酸銨NaOHNaClTris·Cl磷酸鈉溴化乙錠SDS

    儀器、耗材

    離心機電泳儀培養箱紫外線透照儀雜交爐

    實驗步驟

    1.  用72 ml 水溶解1 g 瓊脂糖,在水浴中冷至60℃時,移至通風櫥中加入10×MOPS電泳緩沖液和18 ml 12.3 mol/l 甲醛。

     

    2.  鋪制凝膠使之凝固,拔去梳子,將凝膠放進電泳池,加入足夠的1×MOPS電泳緩沖液使能淹沒凝膠面1 mm 左右。
     

    3.  將每份樣品的體積用水調整至11 μl,然后加入:


    (1)5 μl  10×MOPS電泳緩沖液

    (2)9 μl  12.3 mol/l 甲醛

    (3)25 μl  甲酰胺


    (4)在漩渦混合器振蕩混勻,并在微量離心機中短暫離心5~10 s 回收液滴,然后在55℃保溫15 min。

     

    4.   加入10 μl 醛加樣緩沖液,在旋渦混合器中振蕩,并在微量離心機中稍加離心以回收液滴。

    5.  每分樣品在一對加樣孔中分別加入0.5~10 μg RNA樣品,以便可取半片凝膠進行染色顯。

    6.  在5 V/cm 電壓降下電泳至溴酚藍染料泳動了凝膠長度的一半或三分之二。

     

    7.  用溴化乙錠染色

    (1)取出凝膠,切下需要染色的泳道。

    (2)放置于無RNa酶的玻璃平血,加 入足夠量的0.5 mol/l 乙酸銨覆蓋,浸泡20 min 換液再泡20 min 以除去甲醛。

    (3)傾去液體,加入含0.5 μl /ml 溴化乙錠的0.5 mol/l 乙酸銨,染色40 min。

    (4)必要時以0.5 mol/l 乙酸銨脫色1 h。


    8.  用吖啶橙染色

    (1)取出凝膠,切下需要染色的泳道。

    (2)在含10 μg/l 吖啶橙的1.1 mol/l 甲醛/10 mmo/l 磷酸鈉中染色2 min。

    (3)在不含吖啶橙的同樣液體中脫色20 min。

    9.  在紫外線透照儀中使凝膠中的RNA顯跡,沿凝膠的邊緣放一把尺子拍照,以便隨后能確定膜中的條帶。

     

    10.  將非染色的部分凝膠放置于無RNA酶的玻璃平皿,加足夠的去離子水浸洗幾次以除去甲醛。

     

    11.  凝膠浸泡在10倍體枳的0.05 mol/l NaOH/1.5 mol/l NaCl中30 min,使RNA部分水解。

    12.  接著浸泡于10倍體積的0.5 mol/l Tris·Cl(pH7.4)/1.5 mol/l NaCl緩沖液中和30 min。

    13.  將溶液換成10倍體枳的20×SDS,浸泡45 min。

     

    14.  在玻璃或塑料平皿中放置一比凝膠略大的矩形海綿(必要時,可并排放兩塊或更多)加入足夠的20×SDS以使海綿半淹沒在液體中。


    15.  構筑轉移平臺,剪3張與海綿同樣大小的Whatman 3 MM 濾紙,放在海綿表面,并以20×SDS潤濕。

    16.  把凝膠置于濾紙表面,用玻璃吸管在其表面滾動擠壓去除氣泡,切4條塑料保鮮瞋覆蓋在凝晈的邊緣。

    17.  剪一片與凝膠暴露面枳大小相當的尼龍膜或硝酸纖維素膠膜,在一個無RNA酶的玻璃平皿中加入約0.5 mm深的去離子水,將膜漂住水面使之潤濕,直至膜沉沒在水中。

    18.  如果是尼龍膜,只需讓膜在水中泡上5 min,如杲是硝酸纖維素膜,換成20×SDS再浸泡10 min。

    19.  將潤濕了的膜放在凝膠表面,排去氣泡,以20×SDS洗膜表面。

    20.  切5張與膜大小相 當的Whatman 3 MM 濾紙,放于膜的表面。

    21.  然后將切得如膜大小相當的紙巾整齊地堆放在濾紙的表面,高約4 cm。

    22.  在紙堆的頂部放一塊玻璃平板,壓一重物(0.2~0.4 kg),放置過夜。

    23.  拆卸轉移裝置,回收膜和壓扁了的凝膠,在膜上用鉛筆標上加樣孔的位置和方向。

    24.  用2×SDS洗膜,然后放在一張Whatman 3 MM 濾紙上,讓膜完全干燥

    25.  硝酸纖維素膜的處理:將膜夾在兩張Whatman 3 MM 濾紙中,80℃真空烤膜2 h。

    26.  尼龍膜的處理:如上述方法烤膜或將干的膜包在能透過紫外線的塑料保鮮膜中,將有RNA的一面朝下,用紫外線透照儀照射合適的時間。

     

    27.  如需要的話,凝膠可按步驟7或8操作,用溴化乙錠或吖啶橙染色以檢查轉印效率,或在含0.03%(w/v)亞甲藍的0.3 mol/l pH5.2的乙酸鈉緩沖液中染色45 s,在水中脫色2 min。

    28.  制備放射比活在108 dpm 以上的寡核苷酸探針,并除去未標的寡核苷酸。

    29.  用6×SSC液潤濕攜帶RNA的膜。

     

    30.  將膜帶RNA的面朝上,放入雜交管中,毎10 cm2 面積加入1 ml 甲酰胺預雜交液/ 雜交液,雜交管在雜交爐中旋轉保溫3 h 溫度設定在42℃(DNA探針)或60℃(RNA探針)。

     

    31.  如果是雙鏈探針的話,需在水浴或加熱器中加熱至100℃,保溫10 min,移至冰上。

    32.  吸所需要體積的探針加入雜交管中,在雜交爐中于42℃(DNA探針)或60℃(RNA探針)旋轉過夜。

     

    33.  倒出雜交液,按以下程序依次洗膜:


    (1)2×SSC/0.1%SDS室溫旋轉洗滌2次,每次5min。

    (2)0.2×SSC/0.1%SDS室溫旋轉洗滌2次,每次5min(低嚴謹度洗滌)。


    (3)于42℃預熱0.2×SSC/0.1%SDS,在此溫度下洗滌2次,每次15 min(中嚴謹度洗滌,可選)。


    (4)于68℃預熱0.1×SSC/0.1%SDS,在此溫度下洗滌2次,每次15 min(高嚴謹度洗滌,可選)。
     

    34.  在室溫以2×SSC洗膜,吸干多余液體,蓋上可透過紫外線的塑料保鮮膜,并進行放射自顯影。


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